Zwiększenie wydatku energetycznego jest atrakcyjnym podejściem do walki z ogólnoświatową epidemią otyłości i cukrzycy typu 2. Ćwiczenia fizyczne są ważnym elementem dobrego stanu zdrowia i stanowią pierwszą linię terapii dla ludzi z różnymi zaburzeniami metabolicznymi: otyłością, cukrzycą i niealkoholowym stłuszczeniem wątroby. Ostatnie dane wykazały, że ćwiczenia fizyczne, oprócz wykorzystania kalorii do wykonania pracy fizycznej, powodują również wzrost wydatku energetycznego poprzez zwiększenie ilości brązowej tkanki tłuszczowej i brązowienie białej tkanki tłuszczowej (ryc. 1) (1,2). Rzeczywiście, te efekty na brązową tkankę tłuszczową mogą stanowić część długotrwałych korzyści z ćwiczeń.

Rycina 1

Rekombinowana iryzyna reguluje program termogeniczny w tłuszczu poprzez ścieżki ERK i p38. Rekombinowana iryzyna produkowana w drożdżach jest glikozylowana i aktywna. Indukuje ona termogeniczny program genowy w komórkach 3T3-L1 i pierwotnych podskórnych adipocytach. Zabiegi in vivo tego rekombinowanego białka u myszy wykazują silne działanie przeciw otyłości i poprawiają systematyczną homeostazę glukozy.

Ten brązowy tłuszcz, we wszystkich swoich wymiarach, może poprawić cukrzycę typu 2 i zdrowie metaboliczne wydaje się być ustaloną nauką, przynajmniej u zwierząt doświadczalnych (3). Komórki te wyrażają UCP1 i mają wysoką zawartość mitochondriów, rozpraszając w ten sposób energię chemiczną w postaci ciepła. W rzeczywistości, poprawa tolerancji glukozy obserwowana z „brązowieniem” białej tkanki tłuszczowej i powstawaniem „beżowych” lub „brite” komórek może być większa niż oczekiwano wyłącznie od ich wpływu na masę ciała i otyłość (4). Potwierdzona obecność brązowej tkanki tłuszczowej UCP1+ u ludzi zwiększyła zainteresowanie znalezieniem metod i cząsteczek, które mogą zwiększyć wydatek energetyczny poprzez brązowienie komórek beżowej tkanki tłuszczowej (5-7). Kilka polipeptydów, w tym FGF21, BMP7/8b, BNP/ANP i oreksyna, mają interesujące efekty brązowienia (8-12). Irisin był przedmiotem zainteresowania, ponieważ jest indukowany podczas ćwiczeń u gryzoni i jest przynajmniej częściowo odpowiedzialny za odpowiedź brązowienia obserwowaną w białej tkance tłuszczowej podczas przewlekłych ćwiczeń (2). Polipeptyd macierzysty, FNDC5, jest syntetyzowany jako białko błonowe typu 1, a następnie rozszczepiany i wydzielany do krążenia jako wysoce glikozylowany polipeptyd o masie około 12 kDa. Irisin wydaje się działać preferencyjnie na brązowienie białych złogów tłuszczu, gdy jest podwyższona we krwi otyłych myszy poprzez wektory wirusowe. Koreluje to z poprawą tolerancji glukozy u otyłych myszy. Jeśli chodzi o ludzką iryzynę, jest jasne, że mRNA FNDC5 jest zwiększone w mięśniach szkieletowych w niektórych paradygmatach ćwiczeń, ale nie w innych (2,13,14). Co ciekawe, dwa artykuły donoszą, że ludzcy pacjenci z cukrzycą mają niedobór iryzyny w porównaniu z normalnymi odpowiednikami (15,16). Ponieważ mRNA ludzkiej iryzyny ma kodon startowy AUA w miejscu, gdzie u innych gatunków występuje klasyczny kodon startowy ATG, pojawiła się możliwość, że ludzki gen może nie kodować białka (17), chociaż duża liczba badań mierzących ludzką iryzynę we krwi za pomocą różnych przeciwciał i metod wydaje się zamykać tę kwestię (15,16,18-22).

W tym numerze Zhang i wsp. (23) zajęli się ścieżkami transdukcji sygnału, za pomocą których iryzyna napędza brązowienie białych komórek tłuszczowych. W artykule tym wykorzystano iryzynę ssaków produkowaną w komórkach drożdży i stwierdzono, że jest ona zarówno silnie glikozylowana, jak i biologicznie aktywna, gdy zostanie umieszczona na komórkach 3T3-L1 lub hodowlach pierwotnych z depot pachwinowego szczura. Efekty na komórkach 3T3-L1 są szczególnie imponujące, ponieważ komórki te są ogólnie postrzegane jako bardzo „białe”, lub nie podatne na indukcję mRNA kodującego UCP1 i inne geny termogeniczne. Artykuł pokazuje dość przekonująco, że te efekty brązowienia zależą od aktywacji kaskad sygnalizacyjnych kinazy ERK (extracellular signal-related kinase) i kinazy białkowej p38. Podczas gdy obie te kinazy zostały wcześniej powiązane z termogenicznym działaniem innych czynników na brązową tkankę tłuszczową, w tym agonistów β-adrenergicznych i FGF21, ich rola w działaniu iryzyny nie była znana (11,24,25). Transdukcja sygnału poprzez ERK i p38 zachodzi w ciągu 20 min po dodaniu iryzyny do hodowli komórkowej. Szybka odpowiedź i dowody na to, że iryzyna bezpośrednio wiąże się z błoną komórkową, wskazują na niezidentyfikowany jeszcze receptor iryzyny obecny zarówno w pierwotnych komórkach pachwinowych, jak i komórkach 3T3-L1. Dalsze badania pokażą, jak ekspresja i aktywacja tego receptora jest regulowana w warunkach fizjologicznych (wysiłek fizyczny) i/lub patologicznych (choroby metaboliczne). Co ważne, Zhang i wsp. dalej wykazać, że mutacja jednego z miejsc glikozylacji iryzyny naruszył jego aktywność; czy jest to spowodowane ścisłym wymogiem tych modyfikacji dla (putative) wiązania receptora lub czy wpływają one na składanie białka / rozpuszczalność nie była adresowana.

Ostatni i import, Zhang i wsp. (23) dał iryzynę przez wstrzyknięcie codziennie przez 2 tygodnie i widział silne zmiany w masie ciała, brązowienie tkanek tłuszczowych i poprawy tolerancji glukozy. Podczas gdy te dane są zgodne z naszymi wcześniejszymi badaniami przy użyciu wektorów wirusowych, wykazanie tych efektów przy użyciu stabilnej wersji białka jest bardzo znaczącym krokiem w kierunku ludzkich terapii.

Skalowanie i produkcja białek rekombinowanych w drożdżach jest dobrze ugruntowana, więc ten nowy odczynnik iryzyny będzie bardzo interesujący dla dziedzin cukrzycy, metabolizmu i nauki o ćwiczeniach. Ćwiczenia fizyczne, oczywiście, przynoszą korzyści w innych zaburzeniach wątroby, serca, mięśni i mózgu. Bardzo interesujące będzie zastosowanie tych i innych preparatów iryzyny w modelach innych stanów chorobowych. Identyfikacja receptora iryzyny otworzy również nowe możliwości aktywacji tych obszarów.

Informacja o artykule

Duality of Interest. B.M.S. jest konsultantem i udziałowcem w Ember Therapeutics, Inc. Nie zgłoszono żadnych innych potencjalnych konfliktów interesów istotnych dla tego artykułu.

Przypisy

  • Zobacz towarzyszący artykuł oryginalny, s. 514.

  • © 2014 by the American Diabetes Association.

Czytelnicy mogą korzystać z tego artykułu, o ile praca jest odpowiednio cytowana, wykorzystanie ma charakter edukacyjny i nie jest nastawione na zysk, a praca nie jest zmieniana. Zobacz http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/ w celu uzyskania szczegółowych informacji.

    1. Xu X,
    2. Ying Z,
    3. Cai M,
    4. et al

    . Exercise ameliorates high-fat diet-induced metabolic and vascular dysfunction, and increases adipocyte progenitor cell population in brown adipose tissue. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol 2011;300:R1115-R1125pmid:21368268

    1. Boström P,
    2. Wu J,
    3. Jędrychowski MP,
    4. et al

    . A PGC1-α-dependent myokine that drives brown-fat-like development of white fat and thermogenesis. Nature 2012;481:463-468pmid:22237023

    1. Enerbäck S

    . Metabolizm tkanki tłuszczowej w 2012 roku: Plastyczność tkanki tłuszczowej i nowe cele terapeutyczne. Nat Rev Endocrinol 2013;9:69-70pmid:23296169

    1. Seale P,
    2. Conroe HM,
    3. Estall J,
    4. et al

    . Prdm16 determinuje program termogeniczny podskórnej białej tkanki tłuszczowej u myszy. J Clin Invest 2011;121:96-105pmid:21123942

    1. Cypess AM,
    2. Lehman S,
    3. Williams G,
    4. et al

    . Identyfikacja i znaczenie brązowej tkanki tłuszczowej u dorosłych ludzi. N Engl J Med 2009;360:1509-1517pmid:19357406

    1. van Marken Lichtenbelt WD,
    2. Vanhommerig JW,
    3. Smulders NM,
    4. et al

    . Cold-activated brown adipose tissue in healthy men. N Engl J Med 2009;360:1500-1508pmid:19357405

    1. Virtanen KA,
    2. Lidell ME,
    3. Orava J,
    4. et al

    . Functional brown adipose tissue in healthy adults. N Engl J Med 2009;360:1518-1525pmid:19357407

    1. Fisher FM,
    2. Kleiner S,
    3. Douris N,
    4. et al

    . FGF21 reguluje PGC-1α i brązowienie białych tkanek tłuszczowych w termogenezie adaptacyjnej. Genes Dev 2012;26:271-281pmid:22302939

    1. Tseng YH,
    2. Kokkotou E,
    3. Schulz TJ,
    4. et al

    . New role of bone morphogenetic protein 7 in brown adipogenesis and energy expenditure. Nature 2008;454:1000-1004pmid:18719589

    1. Whittle AJ,
    2. Carobbio S,
    3. Martins L,
    4. et al

    . BMP8B zwiększa termogenezę brązowej tkanki tłuszczowej poprzez działania zarówno centralne, jak i obwodowe. Cell 2012;149:871-885pmid:22579288

    1. Bordicchia M,
    2. Liu D,
    3. Amri EZ,
    4. et al

    . Cardiac natriuretic peptides act via p38 MAPK to induce the brown fat thermogenic program in mouse and human adipocytes. J Clin Invest 2012;122:1022-1036pmid:22307324

    1. Sellayah D,
    2. Bharaj P,
    3. Sikder D

    . Orexin jest wymagane dla rozwoju brązowej tkanki tłuszczowej, różnicowania i funkcji. Cell Metab 2011;14:478-490pmid:21982708

  1. Pekkala S, Wiklund P, Hulmi JJ, et al. Are skeletal muscle FNDC5 gene expression and irisin release regulated by exercise and related to health? J Physiol 2013;591:5393-5400

    1. Lecker SH,
    2. Zavin A,
    3. Cao P,
    4. et al

    . Expression of the irisin precursor FNDC5 in skeletal muscle correlates with aerobic exercise performance in patients with heart failure. Circ Heart Fail 2012;5:812-818pmid:23001918

    1. Park KH,
    2. Zaichenko L,
    3. Brinkoetter M,
    4. et al

    . Circulating irisin in relation to insulin resistance and the metabolic syndrome. J Clin Endocrinol Metab. 20 September 2013pmid:24057291

    1. Choi YK,
    2. Kim MK,
    3. Bae KH,
    4. et al

    . Stężenie iryzyny w surowicy krwi w nowo ujawnionej cukrzycy typu 2. Diabetes Res Clin Pract 2013;100:96-101pmid:23369227

    1. Raschke S,
    2. Elsen M,
    3. Gassenhuber H,
    4. et al

    . Evidence against a beneficial effect of irisin in humans. PLoS One 2013;8:e73680pmid:24040023

    1. Vamvini MT,
    2. Aronis KN,
    3. Panagiotou G,
    4. et al

    . Irisin mRNA and circulating levels in relation to other myokines in healthy and morbidly obese humans. Eur J Endocrinol 2013;169:829-834pmid:24062354

    1. Huh JY,
    2. Panagiotou G,
    3. Mougios V,
    4. et al

    . FNDC5 i irysyna u ludzi: I. Predictors of circulating concentrations in serum and plasma and II. mRNA expression and circulating concentrations in response to weight loss and exercise. Metabolism 2012;61:1725-1738pmid:23018146

    1. Gouni-Berthold I,
    2. Berthold HK,
    3. Huh JY,
    4. et al

    . Wpływ leków obniżających poziom lipidów na iryzynę u ludzi in vivo i w ludzkich komórkach mięśni szkieletowych ex vivo. PLoS One 2013;8:e72858pmid:24023786

    1. Swick AG,
    2. Orena S,
    3. O’Connor A

    . Irisin levels correlate with energy expenditure in a subgroup of humans with energy expenditure greater than predicted by fat free mass. Metabolism 2013;62:1070–1073pmid:23578923

    1. Stengel A,
    2. Hofmann T,
    3. Goebel-Stengel M,
    4. Elbelt U,
    5. Kobelt P,
    6. Klapp BF

    . Circulating levels of irisin in patients with anorexia nervosa and different stages of obesity-correlation with body mass index. Peptides 2013;39:125-130pmid:23219488

  2. Zhang Y, Li R, Meng Y, et al. Irisin stimulates browning of white adipocytes through mitogen-activated protein kinase p38 MAP kinase and ERK MAP kinase signaling. Diabetes 2014;63:514-525

    1. Ye L,
    2. Kleiner S,
    3. Wu J,
    4. et al

    . TRPV4 is a regulator of adipose oxidative metabolism, inflammation, and energy homeostasis. Cell 2012;151:96-110pmid:23021218

    1. Cao W,
    2. Daniel KW,
    3. Robidoux J,
    4. et al

    . p38 Mitogen-activated protein kinase is the central regulator of cyclic AMP-dependent transcription of the brown fat uncoupling protein 1 gene. Mol Cell Biol 2004;24:3057-3067pmid:15024092

.

Articles

Dodaj komentarz

Twój adres e-mail nie zostanie opublikowany.