W ssakach, kinaza lekkiego łańcucha miozyny (MLCK) jest kodowana przez geny mylk1 i mylk2 (Herring i in., 2006). mylk2 koduje izoformę MLCK, która ulega ekspresji wyłącznie w komórkach mięśni szkieletowych (Herring i in., 2006; Wang L. i in., 2016). Ze względu na brak danych dotyczących produktów kodujących genu mylk2, omawiamy głównie produkty genu mylk1, do których należą długołańcuchowa MLCK (220 kDa), krótkołańcuchowa MLCK (130 kDa) oraz niekatalityczne białko o karboksy-końcowym (17 kDa), telokina (Chen i in., 2013; Chen C. et al., 2014; An et al., 2015). Produkty kodujące genu mylk1 ulegają ekspresji w różnych typach komórek i tkanek, w tym w mięśniach, płytkach krwi, komórkach wydzielniczych i mózgowych (Jin et al., 2002). Liczne czynności komórkowe, takie jak skurcz, adhezja, migracja komórek i tworzenie bariery nabłonkowej zachodzą w sposób zależny lub niezależny od fosforylacji regulacyjnego łańcucha lekkiego miozyny (MLC) (Chen i in., 2013; Chen C. i in., 2014; Kim i Helfman, 2016). Nieprawidłowa ekspresja MLCK została zaobserwowana w wielu chorobach zapalnych, w tym w zapaleniu trzustki (Shi i in., 2014), chorobach układu oddechowego (Zhou i in., 2015), chorobach układu sercowo-naczyniowego (Cheng i in., 2015), nowotworach (Zhou i in., 2014) oraz nieswoistych zapaleniach jelit (IBD) (Yi i in., 2014). Omówiono udział MLCK i szlaku sygnalizacyjnego MLCK, które leżą u podstaw reprezentatywnych chorób zapalnych. Niektóre choroby, w których MLCK jest zaangażowana, wymieniono w tabeli 1.
TABELA 1. Rola kinazy łańcucha lekkiego miozyny (MLCK) w wybranych chorobach.
MLCK in Respiratory Diseases, Atherosclerosis, and Pancreatitis
W zapalnych chorobach płuc, uszkodzenie integralności bariery komórek śródbłonka płuc zmienia przepuszczalność naczyń krwionośnych i często dochodzi do zalewania pęcherzyków płucnych (Mao et al., 2015). Nieprawidłowa ekspresja MLCK występuje w uszkodzeniu płuc, a inhibitor MLCK ML-7 lub delecja genu MLCK może osłabiać uszkodzenie płuc (Wang T. i in., 2016). MLCK ma podobną aktywność w astmie i w zapaleniu płuc, a zmienność genu MYLK jest silnie związana z ostrym uszkodzeniem płuc i podatnością na astmę (Wang i in., 2014, 2015; Wang T. i in., 2016).
Dysfunkcja bariery śródbłonkowej indukowana przez MLCK jest również zaangażowana w zapalenie trzustki i miażdżycę (Cheng i in., 2015; Wang i in., 2014; Wang T. i in., 2016). Ciężkie ostre zapalenie trzustki wiąże się z wysoką zachorowalnością i śmiertelnością. Jego patogeneza nie jest do końca poznana (Zerem, 2014), ale ekspresja MLCK jest znacząco zwiększona w szczurzych modelach ostrego zapalenia trzustki (Shi i in., 2014), a podwyższenie stężenia czynnika martwicy nowotworów (TNF)-α w ciężkim ostrym zapaleniu trzustki okazało się pośredniczyć w zależnej od MLCK regulacji cytoszkieletu, prowadząc do zniszczenia funkcji bariery śródbłonkowej (Shi i in., 2014; Yu i in., 2016). Zapoczątkowanie i rozwój miażdżycy często prowadzi do postępującego uszkodzenia naczyń, któremu towarzyszy dysfunkcja śródbłonka (Phinikaridou i wsp., 2015). Udział MLCK w naturalnej historii miażdżycy został potwierdzony poprzez łagodzenie uszkodzenia naczyń i miażdżycy przez ML-7, inhibitor MLCK (Cheng i in., 2015).
MLCK in Cancer Development
Nieprawidłowa ekspresja MLCK została zaobserwowana w liniach komórkowych raka trzustki, płuc i prostaty (Tohtong i in., 2003; Nagaraj i in., 2010; Chen i in., 2011). Szybkie, dynamiczne zmiany cytoszkieletu są niezbędne do inwazji i przerzutów komórek nowotworowych. Zależna od MLCK fosforylacja cytoszkieletu miozyny II zwiększa potencjał przerzutowy komórek nowotworowych, a zależna od MLCK rearanżacja cytoszkieletu moduluje funkcje bariery śródbłonka naczyniowego związane z angiogenezą, która jest krytycznym etapem w rozwoju nowotworów (Dudek i Garcia, 2001). Z drugiej strony, potencjał przerzutowy komórek raka piersi jest zwiększony przez utratę MLCK (Kim i Helfman, 2016). Zmiany w migracji i adhezji komórek są również charakterystycznymi wczesnymi etapami zapalenia, ale istnieje niewiele doniesień na temat regulacji MLCK w migracji komórek zapalnych.
MCLK w IBD
Zapalne choroby jelit, w tym wrzodziejące zapalenie jelita grubego i choroba Leśniowskiego-Crohna, charakteryzują się przewlekłym zapaleniem przewodu pokarmowego i wiążą się ze znacznym upośledzeniem sprawności pacjentów oraz wysokimi kosztami leczenia (Rai i in., 2015). Chociaż patogeneza IBD pozostaje niejasna, istnieją dowody na to, że dysfunkcja bariery jelitowej jest głównym czynnikiem sprawczym (Hindryckx i Laukens, 2012; Pastorelli i in., 2015). Dysfunkcja połączeń ścisłych prowadzi do uszkodzenia bariery jelitowej, która umożliwia przechodzenie różnych patogenów (Jin i Blikslager, 2016). Połączenia ścisłe składają się z białek transmembranowych, takich jak okludyny i klaudyny oraz peryferyjnych białek błonowych, tj. białek zonula occludens (Van Itallie i Anderson, 2014). Połączenia ścisłe znajdują się w apikolateralnym regionie komórek śródbłonka i są związane z pierścieniem aktynozyn przezbłonowych. Indukowana przez MLCK fosforylacja aktyomiozyny perijunkcyjnej pośredniczy w utracie połączeń ścisłych, co może zapoczątkować inicjację i rozwój IBD. Ekspresja i aktywność MLCK jest zwiększona w IBD u ludzi i jest związana z histologicznymi dowodami aktywności choroby (Blair et al., 2006). Nieprawidłowe podwyższenie MLCK zaobserwowano również w doświadczalnym zapaleniu jelita grubego indukowanym przez podawanie sodowego siarczanu dekstranu przez zgłębnik lub wewnątrzkolonijne podawanie kwasu trinitrobenzenosulfonowego (Su i wsp., 2013; Xiong i wsp., 2016).
AktywacjaMLCK w IBD
TNF-α jest cytokiną prozapalną, która powoduje dysfunkcję bariery ścisłego połączenia jelitowego, co jest centralnym elementem patogenezy IBD (Saleh et al., 2016). W IBD sygnalizacja pośredniczona przez receptor 2 (R2) TNF przyczynia się do zwiększonej ekspresji nabłonkowej MLCK (Su i wsp., 2013; Suzuki i wsp., 2014). W ostatnim doniesieniu Al-Sadi i wsp. (2013), przepuszczalność ścisłych połączeń monowarstw komórek Caco-2, w modelu in vitro nabłonka jelitowego, była zwiększona przez aktywację przez TNF-α szlaku sygnałowego ERK1/2. Aktywacja szlaku ERK1/2 indukowała fosforylację zawierającego domenę ETS czynnika transkrypcyjnego Elk-1. Aktywowany Elk-1 przemieszczał się następnie do jądra i wiązał się z promotorem MLCK, co ostatecznie prowadziło do ekspresji MLCK w nabłonku. LIGHT (lymphotoxin-like inducible protein that competes with glycoprotein D for herpes virus entry on T cells) jest członkiem rodziny rdzeni TNF, który jest zaangażowany w patogenezę ludzkiego IBD (Krause i in., 2014), a w hodowlanym nabłonku hamowanie MLCK łagodziło utratę bariery indukowaną przez LIGHT, co sugerowało, że utrata bariery nabłonkowej indukowana przez LIGHT może zależeć od aktywacji MLCK (Schwarz i in., 2007).
Zwiększenie przepuszczalności połączeń ścisłych przez IL-1β-mediowane zwiększenie ekspresji MLCK wykazano w chorobach zapalnych (Beard i in., 2014). W migracji mezenchymalnych komórek macierzystych wykazano, że IL-1β powoduje wzrost ekspresji nabłonkowej MLCK poprzez aktywację szlaku PKCd/NF-κB; stymulowała również aktywność MLCK poprzez szlak sygnałowy PKCa/MEK/ERK (Lin i in., 2014).
IFN-γ został również powiązany z aktywacją MLCK poprzez promowanie adhezji i internalizacji bakterii komensalnych przez nabłonkowe MLCK-activated brush border fanning (Wu et al., 2014). Jednakże, podobnie jak w przypadku regulacji MLCK przez LIGHT, konieczne są dalsze badania nad regulacją MLCK przez INF-γ, aby ustalić, czy jest ona bezpośrednia. Ścieżki sygnałowe związane z regulacją MLCK przedstawiono na rysunku uzupełniającym S1.
MLCK-Associated Signaling Pathways That Can Trigger IBD
W IBD, dysfunkcja bariery nabłonkowej wywołana przez MLCK jest wyzwalana przez dwie ścieżki sygnałowe. Po pierwsze, w jelicie, nabłonek tworzy barierę przed patogenami w świetle. Nieprawidłowa ekspresja MLCK w chorobach zapalnych przewodu pokarmowego prowadzi do fosforylacji regulacyjnego łańcucha lekkiego miozyny II (MLC), skurczu pierścienia aktomiozyny i zwiększonej przepuszczalności jelit (Yi i in., 2015). Zatem zależna od MLCK fosforylacja MLC jest istotnym mechanizmem leżącym u podstaw indukowanej przez MLCK dysfunkcji bariery nabłonkowej. Drugi mechanizm obejmuje stymulowane przez MLCK zwiększenie ekspresji klaudyny-2 i endocytozę okludyny (Su i in., 2013; Jin i Blikslager, 2016). Zwiększona ekspresja klaudyny-2 została powiązana z dysfunkcją bariery nabłonka jelitowego (Hu i in., 2015; Krishnan i in., 2015), a także ze zmniejszonym wchłanianiem, biegunką z przeciekiem i odpowiedzią zapalną (Hu i in., 2015). Down-regulation of occludin in IBD decreases gastrointestinal permeability, which may disrupt the integrity of the barrier against a variety of pathogens (Yin et al., 2015).
Potential Pathological Role of Smooth Muscle MLCK in IBD
Smooth muscle (sm) MLCK is transcribed from the same gene as epithelial MLCK. Jest zaangażowana w regulację skurczu sm, a zmienność zawartości smMLCK prowadzi do zaburzeń motoryki (Chen i in., 2015). Zaburzenia motoryki wtórnie powodują nieprawidłowy wzrost flory jelitowej, co z kolei nasila patogenezę stanu zapalnego jelit (Chen D. i wsp., 2014; Welch i wsp., 2014). To, czy istnieje bezpośredni wpływ smMLCK na choroby zapalne, wymaga dalszych badań.
InhibitoryMLCK o potencjalnym zastosowaniu farmaceutycznym
Kinaza lekkich łańcuchów miozyny posiada domeny katalityczne, hamujące oraz wiążące kalmodulinę (Chang i wsp., 2016). Aktywność domeny katalitycznej może być ujawniona przez częściowe trawienie tryptyczne i może być blokowana przez inhibitory MLCK (Luck i Choh, 2011; Chang i in., 2016). Inhibitory MLCK działają poprzez kompetycyjne wiązanie w miejscu lub w pobliżu miejsca wiążącego ATP na cząsteczce MLCK (Saitoh i in., 1987; Luck i Choh, 2011). MLCK była szeroko badana w sm, ale jest szeroko rozpowszechniona w komórkach i tkankach zwierzęcych. W związku z tym, określenie aktywności MLCK w innych tkankach ma kluczowe znaczenie; inhibitory MLCK są dobrymi narzędziami do tego celu. Inhibitory MLCK mają również potencjał farmakologiczny jako środki rozszerzające naczynia krwionośne i przeciwzapalne. Niektóre inhibitory MLCK, ich pochodzenie i dowody na działanie farmakologiczne wymieniono w tabeli 2.
TABELA 2. Inhibitory kinazy łańcucha lekkiego miozyny o potencjalnym zastosowaniu farmaceutycznym.
ML-9 i ML-7
ML-9 jest klasycznym inhibitorem MLCK (IC50 = 3,8 μM), który okazał się hamować zarówno zależną od Ca2+kalmoduliny, jak i niezależną smMLCK (Saitoh i in., 1987; Shi i in., 2007). Zarówno ML-9, jak i jego syntetyczne pochodne są dobrymi selektywnymi inhibitorami smMLCK (Ito i in., 2004). Wykazano, że ML-9 obniża ciśnienie wewnątrzgałkowe w oczach królika (Honjo i in., 2002).
Inny inhibitor MLCK, ML-7 , jest środkiem przepuszczalnym dla błon (Shi i in., 2007). Zarówno ML-9 jak i ML-7 są pochodnymi naftalenosulfonamidowymi (Shi i in., 2007). Inhibicja ML-7 jest ponad 30-krotnie silniejsza niż ML-9 (IC50 = 300 nM) (Shi i in., 2007). Jednakże, w porównaniu z ML-9, specyficzne hamowanie MLCK przez smMLCK i inne izoformy MLCK może być mniej silne (Saitoh i in., 1987). Korzystne działanie ML-7 wykazano w wielu schorzeniach, w tym w uszkodzeniu niedokrwiennym/reperfuzyjnym serca (Lin i in., 2012; Zhang i in., 2015), IBD (Cheng i in., 2015) i miażdżycy (Cheng i in., 2015).
Inhibitory MLCK
K-252a, alkaloid mikrobiologiczny oczyszczony z kultur mikrobiologicznych, jest nieselektywnym inhibitorem MLCK (Nakanishi i in., 1992), jak również innych kinaz białkowych, w tym kinazy białkowej C i niektórych kinaz białkowych zależnych od cyklicznych nukleotydów (Nakanishi i in., 1992). KT592 jest pochodną K-252a o zwiększonej selektywności. Wortmannina, wyizolowana i oczyszczona ze szczepu grzybów Talaromyces wortmannin KY12420, jest kolejnym inhibitorem MLCK (Nakanishi et al., 1992). Wykazano, że zmniejsza ona odpowiedzi wydzielnicze w komórkach rdzenia nadnerczy szczurów poprzez hamowanie MLCK (Warashina, 2000) oraz ma działanie przeciwgrzybicze, przeciwkrwotoczne i przeciwzapalne, które może nie być związane z hamowaniem MLCK (Nakanishi et al., 1992). The potential pharmacological effects of these inhibitors warrant further study.
Naturally Occurring Potential Inhibitors of MLCK
As shown in Table 2, some naturally occurring bioactive constituents may be inhibitors of MLCK. W systemie in vitro obejmującym oczyszczoną miozynę i MLCK, kwercetyna hamowała fosforylację miozyny. Hamowanie to może być blokowane przez inhibitor MLCK ML-7, co wskazuje, że kwercetyna może być bezpośrednim inhibitorem MLCK (Zhang et al., 2006). W zwierzęcym modelu zaburzeń motoryki jelit, podanie kapsaicyny znacząco zmniejszyło ekspresję MLCK, co również implikuje MLCK jako cel hamowania przez kapsaicynę (Chen i in., 2015). Zahamowanie w odpowiedzi na kwas salwianolowy B może być pośrednie; zaangażowana jest inna sygnalizacja. Kwas salwianolowy B obniża ekspresję MLCK poprzez upregulację mikroRNA1 (Xiong i in., 2016). Stwierdzono również, że upregulacja mikroRNA-374a, mikroRNA-155, miR-520c-3p i miR-1290 zmniejsza ekspresję MLCK w różnych tkankach (Adyshev et al., 2013; Weber et al., 2014). Alternatywną ścieżką inhibicji są naturalnie występujące związki bioaktywne, które działają pośrednio poprzez mikroRNA. Potrzebne są jednak eksperymenty farmakologiczne specyficzne dla danej choroby, aby potwierdzić działanie potencjalnych naturalnie występujących inhibitorów MLCK.
Podsumowanie
W niniejszym przeglądzie podsumowano dowody na rolę MLCK w chorobach zapalnych, zwłaszcza IBD. Nieprawidłowa ekspresja MLCK jest zaangażowana w różne zdarzenia patologiczne, głównie poprzez powodowanie zmian cytoszkieletu, które zaburzają funkcję bariery nabłonkowej. Efekt działania leków anty-MLCK w poszczególnych chorobach zapalnych zależy od stopnia, w jakim funkcja śródbłonka jest zaangażowana. Zapobieganie efektom ubocznym związanym z leczeniem jest kluczową kwestią, ponieważ MLCK ulega obfitej ekspresji w wielu tkankach. Uwzględnienie dwóch aspektów selektywności pomaga przewidywać i zapobiegać skutkom ubocznym stosowania inhibitorów MLCK. Pierwszym z nich jest selektywne hamowanie MLCK i innych kinaz białkowych, takich jak kinaza białkowa C i kinaza białkowa zależna od cyklicznych nukleotydów; drugim jest selektywne hamowanie różnych izoform MLCK, takich jak smMLCK i nmMLCK. Potencjalne środki farmaceutyczne antyMLCK oferują nowy wgląd w leczenie chorób zapalnych, który różni się od tradycyjnej terapii przeciwzapalnej.
Author Contributions
Conceived and designed the review: DC. References check: DC, YX, CW, LW, ZZ, and LS. Drafted the paper and revised it critically for important intellectual content: DC, YX, CW, LW, ZZ, and LS. Manuskrypt został zaakceptowany przez wszystkich autorów.
Oświadczenie o konflikcie interesów
Autorzy oświadczają, że badania zostały przeprowadzone przy braku jakichkolwiek komercyjnych lub finansowych powiązań, które mogłyby być interpretowane jako potencjalny konflikt interesów.
Podziękowania
Badanie to było wspierane przez National Natural Science Foundation of China (numer grantu 81600440, 81273919) oraz Dalian Municipal Medical Research Foundation.
Materiały uzupełniające
Materiały uzupełniające do tego artykułu można znaleźć online pod adresem: https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fphar.2017.00292/full#supplementary-material
FIGURE S1 | Mechanizmy leżące u podstaw indukowanej przez MLCK regulacji funkcji bariery śródbłonka są pokazane. Strzałki ciągłe wskazują na interakcje bezpośrednie, a strzałki przerywane na interakcje pośrednie.
Adyshev, D. M., Moldobaeva, N., Mapes, B., Elangovan, V., and Garcia, J. G. (2013). MicroRNA regulation of nonmuscle myosin light chain kinase expression in human lung endothelium. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 49, 58-66. doi: 10.1165/rcmb.2012-0397OC
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Al-Sadi, R., Guo, S., Ye, D., and Ma, T. Y. (2013). TNF-α modulation of intestinal epithelial tight junction barrier is regulated by ERK1/2 activation of Elk-1. Am. J. Pathol. 183, 1871-1884. doi: 10.1016/j.ajpath.2013.09.001
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
An, C., Bhetwal, B. P., Sanders, K. M., Somlyo, A. V., and Perrino, B. A. (2015). Role of telokin in regulating murine gastric fundus smooth muscle tension. PLoS ONE 10:e0134876. doi: 10.1371/journal.pone.0134876
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Beard, R. J., Haines, R. J., Wu, K. Y., Reynolds, J. J., Davis, S. M., Elliott, J. E., et al. (2014). Non-muscle Mlck is required for β-catenin- and FoxO1-dependent downregulation of Cldn5 in IL-1β-mediated barrier dysfunction in brain endothelial cells. J. Cell Sci. 127, 1840-1853. doi: 10.1242/jcs.144550
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Blair, S. A., Kane, S. V., Clayburgh, D. R., and Turner, J. R. (2006). Epithelial myosin light chain kinase expression and activity are upregulated in inflammatory bowel disease. Lab. Invest. 86, 191-201. doi: 10.1038/labinvest.3700373
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Chang, A. N., Huang, J., Battiprolu, P. K., Hill, J. A., Kamm, K. E., and Stull, J. T. (2013). The effects of neuregulin on cardiac myosin light chain kinase gene-ablated hearts. PLoS ONE 8:e66720. doi: 10.1371/journal.pone.0066720
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Chang, A. N., Mahajan, P., Knapp, S., Barton, H., Sweeney, H. L., Kamm, K. E., et al. (2016). Cardiac myosin light chain is phosphorylated by Ca2+/calmodulin-dependent and -independent kinase activities. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 113, E3824-E3833. doi: 10.1073/pnas.1600633113
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Chen, C., Tao, T., Wen, C., He, W. Q., Qiao, Y. N., Gao, Y. Q., et al. (2014). Myosin light chain kinase (MLCK) reguluje migrację komórek w mechanizmie niezależnym od fosforylacji regulacyjnego łańcucha lekkiego miozyny. J. Biol. Chem. 289, 28478-28488. doi: 10.1074/jbc.M114.567446
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Chen, D., Xiong, Y., Lin, Y., Tang, Z., Wang, J., Wang, L., et al. (2015). Capsaicin alleviates abnormal intestinal motility through regulation of enteric motor neurons and MLCK activity: relevance to intestinal motility disorders. Mol. Nutr. Food Res. 59, 1482-1490. doi: 10.1002/mnfr.201500039
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Chen, D., Yuan, L., and Xiong, Y. (2014). Nabłonkowa MLCK i MLCK mięśni gładkich mogą odgrywać różne role w rozwoju nieswoistych chorób zapalnych jelit. Dig. Dis. Sci. 59, 1068-1069. doi: 10.1007/s10620-014-3101-y
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Chen, M., Zhang, W., Lu, X., Hoggatt, A. M., Gunst, S. J., Kassab, G. S., et al. (2013). Regulation of 130-kDa smooth muscle myosin light chain kinase expression by an intronic CArG element. J. Biol. Chem. 288, 34647-34657. doi: 10.1074/jbc.M113.510362
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Chen, Q. Y., Xu, L. Q., Jiao, D. M., Yao, Q. H., Wang, Y. Y., Hu, H. Z., et al. (2011). Silencing of Rac1 modifies lung cancer cell migration, invasion and actin cytoskeleton rearrangements and enhances chemosensitivity to antitumor drugs. Int. J. Mol. Med. 28, 769-776. doi: 10.3892/ijmm.2011.775
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Chen, Z., Liu, S., Xia, Y., and Wu, K. (2016). MiR-31 reguluje ścieżkę Rho-associated kinase-myosin light chain (ROCK-MLC) i hamuje inwazję raka żołądka: role RhoA. Med. Sci. Monit. 22, 4679-4691. doi: 10.12659/MSM.898399
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Cheng, X., Wang, X., Wan, Y., Zhou, Q., Zhu, H., and Wang, Y. (2015). Myosin light chain kinase inhibitor ML7 improves vascular endothelial dysfunction via tight junction regulation in a rabbit model of atherosclerosis. Mol. Med. Rep. 12, 4109-4116. doi: 10.3892/mmr.2015.3973
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Cho, Y. E., Ahn, D. S., Morgan, K. G., and Lee, Y. H. (2011). Enhanced contractility and myosin phosphorylation induced by Ca2+-independent MLCK activity in hypertensive rats. Cardiovasc. Res. 91, 162-170. doi: 10.1093/cvr/cvr043
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Droylefaix, M. T., Bueno, L., Caron, P., Belot, E., and Roche, O. (2013). Ocular inflammation and corneal permeability alteration by benzalkonium chloride in rats: a protective effect of a myosin light chain kinase inhibitor. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 54, 2705-2710. doi: 10.1167/iovs.12-10193
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Du, L., Kim, J. J., Shen, J., and Dai, N. (2016). Crosstalk between inflammation and ROCK/MLCK signaling pathways in gastrointestinal disorders with intestinal hyperpermeability. Gastroenterol. Res. Pract. 2016:7374197. doi: 10.1155/2016/7374197
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Dudek, S. M., and Garcia, J. G. N. (2001). Cytoskeletal regulation of pulmonary vascular permeability. J. Appl. Physiol. 91, 1487-1500.
Google Scholar
Herring, B. P., Elmounayri, O., Gallagher, P. J., Yin, F., and Zhou, J. (2006). Regulation of myosin light chain kinase and telokin expression in smooth muscle tissues. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 291, C817-C827. doi: 10.1152/ajpcell.00198.2006
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Hindryckx, P., and Laukens, D. (2012). „Intestinal barrier dysfunction: the primary driver of IBD?”,” in Inflammatory Bowel Disease Advances in Pathogenesis & Management, (Rijeka: In-Tech), 23-40.
Google Scholar
Honjo, M., Inatani, M., Kido, N., Sawamura, T., Yue, B. Y. J. T., Honda, Y., et al. (2002). A myosin light chain kinase inhibitor, ML-9, lowers the intraocular pressure in rabbit eyes. Exp. Eye Res. 75, 135-142. doi: 10.1006/exer.2002.2009
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Hu, C. A. A., Hou, Y., Yi, D., Qiu, Y., Wu, G., Kong, X., et al. (2015). Autofagia i białka ścisłego połączenia w jelicie i chorobach jelit. Anim. Nutr. 1, 123-127. doi: 10.1016/j.aninu.2015.08.014
CrossRef Full Text | Google Scholar
Huang, Y., Luo, X., Li, X., Song, X., Wei, L., Li, Z., et al. (2015). Wogonin inhibits LPS-induced vascular permeability via suppressing MLCK/MLC pathway. Vasc. Pharmacol. 72, 43-52. doi: 10.1016/j.vph.2015.04.012
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Ito, S., Kume, H., Honjo, H., Kodama, I., Katoh, H., Hayashi, H., et al. (2004). ML-9, a myosin light chain kinase inhibitor, reduces intracellular Ca2+ concentration in guinea pig trachealis. Eur. J. Pharmacol. 486, 325-333. doi: 10.1016/j.ejphar.2004.01.013
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Jin, Y., and Blikslager, A. T. (2016). Myosin light chain kinase mediates intestinal barrier dysfunction via occludin endocytosis during anoxia/reoxygenation injury. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 311, C996-C1004. doi: 10.1152/ajpcell.00113.2016
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Jin, Y., Hou, L., and Dixon, S. A. (2002). 220- i 130-kDa MLCKs mają różne rozmieszczenie tkanek i wzory lokalizacji wewnątrzkomórkowej. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 282, C451-C460.
PubMed Abstract | Google Scholar
Kaneko, K., Satoh, K., Masamune, A., Satoh, A., and Shimosegawa, T. (2002). Myosin light chain kinase inhibitors can block invasion and adhesion of human pancreatic cancer cell lines. Pancreas 24, 34-41. doi: 10.1097/00006676-200201000-00005
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Kim, D. Y., and Helfman, D. M. (2016). Utrata MLCK prowadzi do zaburzeń adhezji komórka-komórka i inwazyjnego zachowania komórek nabłonka piersi poprzez zwiększoną ekspresję EGFR i sygnalizację ERK/JNK. Oncogene 43, 50-57. doi: 10.1038/onc.2015.508
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Krause, P., Zahner, S. P., Kim, G., Shaikh, R. B., Steinberg, M. W., and Kronenberg, M. (2014). The tumor necrosis factor family member TNFSF14 (LIGHT) is required for resolution of intestinal inflammation in mice. Gastroenterology 146, 1752-1762. doi: 10.1053/j.gastro.2014.02.010
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Krishnan, M., Sayoc, A., and Mccole, D. (2015). Niedobór genu PTPN2 prowadzi do zwiększonej przepuszczalności nabłonka i promuje zależną od STAT-1 ekspresję Claudin-2. FASEB J. 29(Suppl. 1), 998.
Google Scholar
Lin, C. Y., Zu, C. H., Yang, C. C., Tsai, P. J., Shyu, J. F., Chen, C. P., et al. (2014). IL-1β-induced mesenchymal stem cell migration involves MLCK activation via PKC signaling. Cell Transplant. 24, 2011-2028. doi: 10.3727/096368914X685258
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Lin, H. B., Cadete, V. J. J., Sawicka, J., Woźniak, M., and Sawicki, G. (2012). Effect of the myosin light chain kinase inhibitor ML-7 on the proteome of hearts subjected to ischemia-reperfusion injury. J. Proteomics 75, 5386-5395. doi: 10.1016/j.jprot.2012.06.016
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Luck, S., and Choh, V. (2011). Effects of a myosin light chain kinase inhibitor on the optics and accommodation of the avian crystalline lens. Mol Vis. 17, 2759-2764.
PubMed Abstract | Google Scholar
Mao, S. Z., Ye, X., Liu, G., Song, D., and Liu, S. F. (2015). Resident endothelial cells and endothelial progenitor cells restore endothelial barrier function after inflammatory lung injury. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 35, 1635-1644. doi: 10.1161/ATVBAHA.115.305519
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Minamiya, Y., Nakagawa, T., Saito, H., Matsuzaki, I., Taguchi, K., Ito, M., et al. (2005). Increased expression of myosin light chain kinase mRNA is related to metastasis in non-small cell lung cancer. Tumor Biol. 26, 153-157. doi: 10.1159/000086487
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Mirzapoiazova, T., Moitra, J., Sammani, S., Mambetsariev, B., Chiang, E. T., Evenovski, C., et al. (2009). Critical role for non-muscle MLCK in ventilator-induced lung injury (VILI). J. Investig. Med. 179, 529-530. doi: 10.1164/ajrccm-conference.2009.179.1_meetingabstracts.a3822
CrossRef Full Text | Google Scholar
Nagaraj, N. S., Smith, J. J., Revetta, F., Washington, M. K., and Merchant, N. B. (2010). Targeted inhibition of Src kinase signaling attenuates pancreatic tumorigenesis. Mol. Cancer Ther. 9, 2322-2332. doi: 10.1158/1535-7163.MCT-09-1212
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Nakanishi, S., Kakita, S., Takahashi, I., Kawahara, K., Tsukuda, E., Sano, T., et al. (1992). Wortmannin, a microbial product inhibitor of myosin light chain kinase. J. Biol. Chem. 267, 2157-2163.
Google Scholar
Pastorelli, L., Dozio, E., Pisani, L. F., Boscoloanzoletti, M., Vianello, E., Munizio, N., et al. (2015). Procoagulatory state in inflammatory bowel diseases is promoted by impaired intestinal barrier function. Gastroenterol. Res. Pract. 2015:189341. doi: 10.1155/2015/189341
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Phinikaridou, A., Andia, M. E., Plaza, B. L., Saha, P., Smith, A., and Botnar, R. (2015). Increased vascular permeability is a surrogate marker of atherosclerotic plaque instability. J. Cardiovasc. Magn. Reson. 17(Suppl. 1):Q111. doi: 10.1186/1532-429x-17-s1-q111
CrossRef Full Text | Google Scholar
Prayitnaningsih, S., Sujuti, H., Effendi, M., Abdullah, A., Anandita, N. W., Yohana, F., et al. (2016). Neuropathy optic glaucomatosa induced by systemic hypertension through activation endothelin-1 signaling pathway in central retinal artery in rats. Int. J. Ophthalmol. 9, 1568-1577.
PubMed Abstract | Google Scholar
Rai, T., Wu, X., and Shen, B. (2015). Częstość występowania i czynniki ryzyka niskiego poziomu immunoglobulin u pacjentów z nieswoistymi zapaleniami jelit. Gastroenterol. Rep. 3, 115-121. doi: 10.1093/gastro/gou082
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Saitoh, M., Ishikawa, T., Matsushima, S., Naka, M., and Hidaka, H. (1987). Selective inhibition of catalytic activity of smooth muscle myosin light chain kinase. J. Biol. Chem. 262, 7796-7801.
Google Scholar
Saleh, A. M. E., Al-Robayan, A. A., Mubarak, A. O. M., Misbahul, A., and Al-Asmari, A. K. (2016). Association of tumor necrosis factor-α and -β gene polymorphisms in inflammatory bowel disease. J. Inflamm. Res. 9, 133-140. doi: 10.2147/JIR.S101225
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Schwarz, B. T., Wang, F., Shen, L., Clayburgh, D. R., Su, L., Wang, Y., et al. (2007). LIGHT signals directly to intestinal epithelia to cause barrier dysfunction via cytoskeletal and endocytic mechanisms. Gastroenterology 132, 2383-2394. doi: 10.1053/j.gastro.2007.02.052
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Shen, M. R., Furla, P., Chou, C. Y., and Ellory, J. C. (2002). Myosin light chain kinase modulates hypotonicity-induced Ca2+ entry and Cl- channel activity in human cervical cancer cells. Eur. J. Physiol. 444, 276-285. doi: 10.1007/s00424-002-0811-3
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Shi, H. R., Tang, G. D., Qin, M. B., and He, J. P. (2014). Ekspresja MLCK w ciężkim ostrym zapaleniu trzustki u szczurów. World Chin. J. Digestol. 22, 3904-3910. doi: 10.1016/j.kjms.2016.07.008
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Shi, J., Takahashi, S., Jin, X. H., Li, Y. Q., Ito, Y., Mori, Y., et al. (2007). Myosin light chain kinase-independent inhibition by ML-9 of murine TRPC6 channels expressed in HEK293 cells. Br. J. Pharmacol. 152, 122-131. doi: 10.1038/sj.bjp.0707368
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Spans, L., Helsen, C., Clinckemalie, L., Broeck, T. V. D., Prekovic, S., Joniau, S., et al. (2014). Porównawcze analizy genomiczne i transkryptomiczne linii komórkowych raka prostaty LNCaP i C4-2B. PLoS ONE 9:e90002. doi: 10.1371/journal.pone.0090002
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Su, L., Nalle, S., Shen, L., Turner, E., Singh, G., Breskin, L., et al. (2013). TNFR2 activates MLCK-dependent tight junction dysregulation to cause apoptosis-mediated barrier loss and experimental colitis. Gastroenterology 145, 407-415. doi: 10.1053/j.gastro.2013.04.011
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Suzuki, M., Nagaishi, T., Yamazaki, M., Onizawa, M., Watabe, T., Sakamaki, Y., et al. (2014). Myosin light chain kinase expression induced via tumor necrosis factor receptor 2 signaling in the epithelial cells regulates the development of colitis-associated carcinogenesis. PLoS ONE 9:e88369. doi: 10.1371/journal.pone.0088369
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Tang, Z. Y., Liu, Z. N., Fu, L., Chen, D. P., Ai, Q. D., and Lin, Y. (2010). Effect of lithium on smooth muscle contraction and phosphorylation of myosin light chain by MLCK. Physiol. Res. 59, 919-926.
PubMed Abstract | Google Scholar
Tohtong, R., Phattarasakul, K., Jiraviriyakul, A., and Sutthiphongchai, T. (2003). Dependence of metastatic cancer cell invasion on MLCK-catalyzed phosphorylation of myosin regulatory light chain. Prostate Cancer Prostatic Dis. 6, 212-216. doi: 10.1038/sj.pcan.4500663
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Van Itallie, C. M., and Anderson, J. M. (2014). Architektura ścisłych połączeń i zasady składu molekularnego. Semin. Cell Dev. Biol. 36, 157-165. doi: 10.1016/j.semcdb.2014.08.011
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Wang, L., Zuo, L., Hu, J., Shao, H., Lei, C., Qi, W., et al. (2016). Dual LQT1 and HCM phenotypes associated with tetrad heterozygous mutations in KCNQ1, MYH7, MYLK2, and TMEM70 genes in a three-generation Chinese family. Europace 18, 602-609. doi: 10.1093/europace/euv043
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Wang, T., Mathew, B., Wu, X., Shimizu, Y., Rizzo, A. N., Dudek, S. M., et al. (2016). Nonmuscle myosin light chain kinase activity modulates radiation-induced lung injury. Pulm. Circ. 6, 234-239. doi: 10.1086/686491
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Wang, T., Moreno-Vinasco, L., Ma, S. F., Zhou, T., Shimizu, Y., Sammani, S., et al. (2014). Nonmuscle myosin light chain kinase regulates murine asthmatic inflammation. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 50, 1129-1135. doi: 10.1165/rcmb.2013-0434OC
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Wang, T., Zhou, T., Saadat, L., and Garcia, J. G. (2015). A MYLK variant regulates asthmatic inflammation via alterations in mRNA secondary structure. Eur. J. Hum. Genet. 23, 874-876. doi: 10.1038/ejhg.2014.201
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Warashina, A. (2000). Mechanism of wortmannin-induced inhibition of secretory responses in rat adrenal medullary cells. Life Sci. 67, 2587-2593. doi: 10.1016/S0024-3205(00)00842-0
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Weber, M., Kim, S., Patterson, N., Rooney, K., and Searles, C. D. (2014). MiRNA-155 targets myosin light chain kinase and modulates actin cytoskeleton organization in endothelial cells. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 306, 1192-1203. doi: 10.1152/ajpheart.00521.2013
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Welch, M. G., Margolis, K. G., Li, Z., and Gershon, M. D. (2014). Oxytocin reguluje ruchliwość przewodu pokarmowego, stan zapalny, przepuszczalność makrocząsteczek i utrzymanie błony śluzowej u myszy. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 307, 848-862. doi: 10.1152/ajpgi.00176.2014
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Wu, L. L., Peng, W. H., Kuo, W. T., Huang, C. Y., Ni, Y. H., Lu, K. S., et al. (2014). Commensal bacterial endocytosis in epithelial cells is dependent on myosin light chain kinase-activated brush border fanning by interferon-γ. Am. J. Pathol. 184, 2260-2274. doi: 10.1016/j.ajpath.2014.05.003
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Wu, Y. H., Zhang, X., and Wang, D. H. (2011). Role of asymmetric dimethylarginine in acute lung injury induced by cerebral ischemia/reperfusion injury in rats. J. South. Med. Univ. 31, 1289-1294.
PubMed Abstract | Google Scholar
Xiong, Y., Wang, J., Chu, H., Chen, D., and Guo, H. (2016). Salvianolic acid B restored impaired barrier function via downregulation of MLCK by microRNA-1 in rat colitis model. Front. Pharmacol. 7:320. doi: 10.3389/fphar.2016.00134
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Xiong, Y. J., Chen, D. P., Lv, B. C., Liu, F. F., Wang, L., and Lin, Y. (2013). The characteristics of genistin-induced inhibitory effects on intestinal motility. Arch. Pharm. Res. 36, 345-352. doi: 10.1007/s12272-013-0053-2
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Xu, C., Wu, X., Hack, B. K., Bao, L., and Cunningham, P. N. (2015). TNF powoduje zmiany w przepuszczalności i morfologii śródbłonka kłębuszków nerkowych poprzez mechanizm zależny od kinazy Rho i kinazy łańcucha lekkiego miozyny. Physiol. Rep. 3:e12636. doi: 10.14814/phy2.12636
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Yi, Z., Fan, H., Liu, X., Tang, Q., Zuo, D., and Yang, J. (2015). Adrenomedullin improves intestinal epithelial barrier function by downregulating myosin light chain phosphorylation in ulcerative colitis rats. Mol. Med. Rep. 12, 3615-3620. doi: 10.3892/mmr.2015.3887
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Yi, Z. F., Fan, H., and Yang, J. (2014). Rola kinazy łańcucha lekkiego miozyny w nieswoistych zapaleniach jelit. World Chin. J. Digestol. 22, 5467-5472. doi: 10.11569/wcjd.v22.i35.5467
CrossRef Full Text | Google Scholar
Yin, J., Wu, M., Duan, J., Liu, G., Cui, Z., Zheng, J., et al. (2015). Pyrrolidine dithiocarbamate inhibits NF-KappaB activation and upregulates the expression of Gpx1, Gpx4, occludin, and ZO-1 in DSS-induced colitis. Appl. Biochem. Biotechnol. 177, 1716-1728. doi: 10.1007/s12010-015-1848-z
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Yu, Q. H., Guo, J. F., Chen, Y., Guo, X. R., Du, Y. Q., and Li, Z. S. (2016). Captopril pretreatment protects the lung against severe acute pancreatitis induced injury via inhibiting angiotensin II production and suppressing Rho/ROCK pathway. Kaohsiung J. Med. Sci. 32, 439-445. doi: 10.1016/j.kjms.2016.07.008
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Zerem, E. (2014). Leczenie ciężkiego ostrego zapalenia trzustki i jego powikłań. World J. Gastroenterol. 20, 13879-13892. doi: 10.3748/wjg.v20.i38.13879
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Zhang, H. L., Tang, Z. Y., Yang, J. X., Zhang, Y., Li, Y., and Lin, Y. (2006). Dwukierunkowa regulacja emodyny i kwercetyny na miozynie mięśni gładkich żołądka. FEBS Lett. 580, 469-473. doi: 10.1016/j.febslet.2005.12.041
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Zhang, Y. S., Liu, B., Luo, X. J., Li, T. B., Zhang, J. J., Peng, J. J., et al. (2015). Nuclear cardiac myosin light chain 2 modulates NADPH oxidase 2 expression in myocardium: a novel function beyond muscle contraction. Archiv Für Kreislaufforschung 110:494. doi: 10.1007/s00395-015-0494-5
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Zhou, T., Wang, T., and Garcia, J. G. (2014). Geny pozostające pod wpływem niemięśniowej izoformy kinazy łańcucha lekkiego miozyny wpływają na prognozę nowotworów u ludzi. PLoS ONE 9:e94325. doi: 10.1371/journal.pone.0094325
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Zhou, T., Wang, T., and Garcia, J. G. (2015). A nonmuscle myosin light chain kinase-dependent gene signature in peripheral blood mononuclear cells is linked to human asthma severity and exacerbation status. Pulmonary Circulation 5, 335-338. doi: 10.1086/680357
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
Zhu, H. Q., Wang, X. B., Han, J. X., Hu, Z. P., Wang, Y., Zhou, Q., et al. (2013). Myosin light chain kinase inhibitor attenuates atherosclerosis and permeability via reduced endothelial tight junction in rabbits. Int. J. Cardiol. 168, 5042-5043. doi: 10.1016/j.ijcard.2013.07.219
PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
.