CSCs v nádorových buňkách Brca1-mutantních myší zprostředkovávají buněčnou migraci in vitro

Předtím jsme izolovali CD24+CD29+ buňky a CD24+CD49f+ buňky, které jsou obohaceny o nádorové iniciační buňky nebo CSCs z primárních nádorů prsu vyvinutých u Brca1-mutantních myší nebo z kultivované buněčné linie, (W0069), která byla odvozena z nádoru prsu s Brca1.39 Abychom otestovali roli těchto buněk v metastazování, vytřídili jsme CD24+CD29+ buňky (budou označovány jako CSC) a CD24-CD29- buňky (non-CSC) z buněčné linie W0069, které obsahují přibližně 15 % CD24+CD29+ buněk, jak bylo uvedeno dříve,39 a zkoumali jsme migrační schopnost pomocí testu hojení ran i transwell testu. Po 24 hodinách vykazovaly CD24/CD29 dvojitě pozitivní buňky lepší migrační schopnost ve srovnání s dvojitě negativními buňkami, jak ukázala velikost rány (obr. 1a). Transwellův migrační test také odhalil významný rozdíl v počtu migrovaných buněk jak na spodním povrchu filtru (175,6±19 vs 54,2±18,1, **P<0,01), tak ve spodní komoře transwellu (82,3±5,5 vs 4,3±2,1 kolonií, **P<0,01) (Obrázek 1b). Podobných výsledků jsme dosáhli, když jsme zkoumali různé subklony odvozené ze stejné buněčné linie, a to buď pozitivní, nebo negativní na přítomnost CSC (údaje nejsou uvedeny). Abychom potvrdili, že CSC mají zvýšenou pohyblivost, smíchali jsme různé množství buněk W0069 s dvojitě negativními buňkami vytříděnými z buněčné linie W0069. Jak ukazuje obrázek 1c, migrační schopnost klesala se snižováním počtu dvojitě pozitivních buněk, ačkoli celkový počet použitých buněk zůstával stabilní při zvyšování počtu CD24-CD29- buněk. Při počátečním použití 5 × 104 buněk W0069 jsme zjistili, že migrující buňky vytvořily 52,6 ± 15,5 kolonií v dolní komoře. Při smíchání 4 × 104 buněk W0069 s 1 × 104 dvojitě negativními buňkami se počet kolonií snížil na 16±2,6. Počet kolonií se dále snižoval, když jsme stále snižovali počet buněk W0069 a zvyšovali počet buněk CD24-CD29- (obrázek 1c). Stejných výsledků bylo dosaženo, když byly buňky W0069 smíchány se subklonem (W0069-202), který má pouze buňky CD24-CD29- (doplňkový obrázek 1a a b). Naopak jsme prokázali, že počet kolonií se zvýšil, když se postupně zvyšoval počet použitých CD24+CD29+ buněk (doplňkový obrázek S1c). K dalšímu ověření úlohy CSC v migraci byly použity buňky značené zeleným fluorescenčním proteinem W0069, pozitivní na přítomnost CSC, a smíchány s vytříděnými neznačenými buňkami CD24-CD29-. Zvýšením počtu pozitivních buněk jsme zaznamenali zvýšení počtu kolonií vytvořených migrujícími buňkami a všechny vytvořené kolonie byly při kontrole pod fluorescenčním mikroskopem zelené, což znamená, že migraci lze pozorovat pouze tehdy, když jsou v buněčné kultuře přítomny CD24+CD29+ buňky (obr. 1d a e). Tyto údaje společně naznačují, že CSC vykazují zvýšenou pohyblivost v nádorových buněčných liniích s mutací Brca1.

Obrázek 1

CSC z buněk s mutací Brca1 vykazují zvýšenou schopnost migrace. (a) Migrace buněk byla analyzována u CD24/CD29 dvojitě pozitivních a negativních buněk na přítomnost CSCs pomocí testu hojení ran. Černé čáry označují hranice migrujících buněk na konci experimentu (t=24 h) (nahoře: malé zvětšení, dole: velké zvětšení). Pro každou podmínku byly použity trojnásobné jamky. (b) Transwellův test migrace buněk pozitivních (horní panely) a negativních (dolní panely) na CSC. Charakteristické obrázky migrovaných buněk ve spodní části filtru (vlevo) a kolonií z migrovaných buněk ve spodní komůrce (vpravo). Je uvedena kvantifikace migrovaných buněk na dně filtru i ve spodní komoře destičky (**P<0,01). (c) Migrační schopnost buněk po smíchání sníženého počtu pozitivních a zvýšeného počtu negativních (P/N) buněk. Obrázky kolonií jsou reprezentativní pro tři různé experimenty. Čísla (50, 40, 30, 20, 10, 0) označují tisíce pozitivních nebo negativních buněk použitých v tomto experimentu. (d, e) Transwellův test motility byl proveden zvýšením počtu pozitivních buněk označených GFP a udržením stabilního počtu neoznačených negativních buněk (d). Kolonie byly kontrolovány na přítomnost fluorescence (e).

CSC u rakoviny s mutací Brca1 zprostředkovávají metastazování rakoviny in vivo

Dále jsme hodnotili potenciální roli CSC v metastazování in vivo. Čerstvě vytříděné CD24+CD29+ a CD24-CD29- buňky a subklony pozitivní nebo negativní pro stejné markery z buněčné linie W0069 byly implantovány do mléčné žlázy 6-8 týdnů starých panenských athymických (nahých) myší. Nejprve jsme zaznamenali, že růst nádoru byl pomalejší, pokud byly tříděné CD24-CD29- buňky porovnávány s buňkami CD24+CD29+ (obr. 2a a b), což je v souladu s představou, že tato populace obohacuje CSC.39 Podobné výsledky byly získány při použití subklonů pozitivních nebo negativních na přítomnost CSC (údaje nejsou uvedeny). Přestože myši injikované buňkami CD24+CD29+ musely být usmrceny dříve (49.-54. den) než myši injikované buňkami CD24-CD29- (60.-69. den) kvůli větší nádorové zátěži, došlo k významnému zvýšení přítomnosti metastáz ve skupině myší injikovaných buňkami CD24+CD29+. Konkrétně 3/15 myší, kterým byly implantovány negativní buněčné linie, mělo v plicích jeden malý nádorový uzlík na myš (obrázek 2c a d). Naproti tomu u 13/18 myší implantovaných pozitivními buněčnými liniemi byly zjištěny metastatické uzlíky v plicích s celkovým počtem více než 100 uzlíků (tento počet může být podhodnocen, protože velikost většiny uzlíků byla mnohem větší a uzlíky nebylo možné přesně spočítat, když jich bylo v jedné plíci příliš mnoho) (obrázek 2c a d). Vzhledem k tomu, že mezi pozitivními a negativními nádory byl přibližně sedminásobný rozdíl ve velikosti primárního nádoru (5000 mm3/700 mm3), zvažovali jsme možnost, že rozdíl v metastázování může být způsoben rozdílem v růstu nádoru. Je však známo, že metastazování nádorů začíná spíše v iniciačních stadiích, kdy jsou nádory malé, než v pozdních stadiích, kdy jsou velké,40 což svědčí proti této možnosti. Kromě toho je rozdíl v počtu uzlin přibližně 33násobný (100/3) a většina uzlin pocházejících z dvojitě pozitivních buněk je mnohem větší než uzliny z dvojitě negativních buněk, což poukazuje na rozdílnou metastatickou schopnost obou subpopulací. Pokud jde o původ tří metastatických uzlíků, je možné, že dvojitě negativní populace může stále obsahovat některé buňky, které mají nižší schopnost iniciovat rakovinu a metastazovat. Případně mohou některé CD24-CD29-buňky získat tyto schopnosti prostřednictvím de-diferenciace. To jsou zajímavé otázky, které si zaslouží další zkoumání.

Obrázek 2

CSC zprostředkovávají metastázy in vivo. (a, b) Tvorba nádorů u nahých myší, kterým byly injikovány buď CD24/CD29 dvojitě pozitivní, nebo negativní buňky CSCs. Do pravého tukového polštářku mléčné žlázy imunokompromitovaných myších samic bylo injikováno 2 × 105 buněk z buněčných linií vytvořených po vytřídění buď CD24+CD29+, nebo CD24-CD29- buněk z Brca1-mutantních buněk W0069. Velikost nádoru byla měřena pomocí kaliperu, pokud byly přítomny viditelné uzlíky. Objem nádoru byl vypočten v mm3 podle vzorce V=1/2rxry2 (r je poloměr a x, y se vztahují k jednotlivým osám). (c, d) Na konci experimentu byly všechny myši z různých skupin (myši s injekcí pozitivní nebo negativní na CSC) usmrceny a různé orgány byly vyšetřeny na přítomnost metastatických uzlin pomocí stereomikroskopu Leica MZ10F. Charakteristické snímky metastatických nádorových uzlin v plicích jsou uvedeny v (c) a počet myší s metastázami je uveden v (d).

CD29 a CD49f hrají rozhodující roli při zprostředkování metastazování rakoviny

Zajímavé je, že profilování těchto metastatických nádorů pomocí analýzy třídění buněk aktivovaných fluorescencí s použitím markerů CD24 a CD29 ukázalo, že ty z dvojitě pozitivních buněčných linií mají podobný profil jako primární nádory nebo původní nádorová buněčná linie (obr. 3a, vlevo). Vzhledem k tomu, že pouze CSC uvnitř nádoru mohou rekapitulovat heterogenitu původního nádoru, naznačuje to, že CSC metastazují a řídí vznik metastatických nádorů. Naproti tomu v nádorech odvozených z negativních buněčných linií nebyly zjištěny žádné dvojitě pozitivní buňky CD24 a CD29, a to ani poté, co metastázovaly (obrázek 3a, vpravo), jak odhalila analýza třídění buněk aktivovaná fluorescencí. Dále jsme byli schopni detekovat CD24+CD29+ buňky pomocí imunofluorescenčního barvení v metastatických uzlinách v plicích z nádorů iniciovaných implantací CD24+CD29+ buněk (obrázek 3b), ale ne z nádorů iniciovaných implantací CD24-CD29- buněk (údaje nejsou uvedeny). V souladu s pozorováním, že CD24+CD29+ buňky mají vyšší mobilitu než CD24-CD29- buňky, barvení protilátkami proti CD24 a CD29 také detekovalo CD24+CD29+ buňky v migrujících buňkách během testu hojení ran (obrázek 3c). Tyto výsledky podporují myšlenku, že CSC vykazují zvýšenou pohyblivost jak in vitro, tak in vivo a hrají klíčovou roli v řízení metastatické schopnosti Brca1-mutovaných nádorů prsu.

Obrázek 3

Analýza CD24+CD49+ buněk v buněčné linii, primárních a metastatických nádorech. (a) Profilování metastatického nádoru, primárního nádoru prsu a původní buněčné linie na markery CSC (CD24, CD29). Reprezentativní příklady primárních a metastatických nádorů u myší, kterým byly aplikovány buď pozitivní (vlevo), nebo negativní (vpravo) buňky pro CSC. (b) Imunofluorescence v metastazujícím plicním nádoru pomocí CD24 a CD29 jako markerů pro CSCs. (c) Migrující buňky in vitro jsou pozitivní na markery CSC. Test hojení ran byl proveden s nádorovou buněčnou linií W0069 s mutací Brca1. Migrující buňky byly imunofluorescenčně obarveny protilátkami proti markerům CSC CD24 a CD29. (d) Buňky W0069 byly pěstovány za podmínek nízkého přilnutí jako nádorové sféry pro obohacení o CSC a barveny protilátkami proti CD24 a CD29 pomocí imunofluorescence. Pro analýzu FACS byly buňky obarveny v koncentraci 1 × 106 buněk na 100 μl pufru (PBS pH 7,2, 0,5 % BSA, 2 mM EDTA) protilátkami proti CD24 (anti CD24-PE, BD Pharmingen), CD29 (anti CD29-FITC, Chemicon) a CD49f (anti CD49f-FITC, BD Pharmingen). Po inkubaci při 4 °C po dobu 25 minut byla provedena analýza pomocí průtokového cytometru FACSCalibur (Becton Dickinson). Pro vytřídění různých buněčných populací byl použit stejný postup a třídění bylo provedeno pomocí přístroje FACSAria Cell Sorter (Becton Dickinson).

Jak CD29 (β1 integrin), tak CD49f (α6 integrin) jsou integrinové podjednotky, které slouží jako receptory extracelulární matrix.41 Protože se extracelulární matrix podílí na mobilitě buněk a metastazování rakoviny,41 zajímalo nás, zda CD29 a CD49f slouží pouze jako markery pro CSC, nebo mají skutečně kritickou roli při zprostředkování metastazování rakoviny. Nejprve jsme vyřadili CD29 u buněk W0069 a CD24+CD29+ pomocí individuální malé interferující RNA (siRNA) cílené na otevřený čtecí rámec CD29 a naše data odhalila znatelnou, avšak nikoli statisticky sníženou migraci buněk siCD29 ve srovnání s kontrolními buňkami (obr. 4a a b). Protože CD29 a CD49f tvoří heterodimery, předpokládali jsme, že CD49f by mohl kompenzovat některé funkce, když je exprese CD29 narušena. Abychom to prozkoumali, vyřadili jsme v těchto buňkách CD49f pomocí siRNA (obrázek 4a). Naše údaje ukázaly, že samotné vyřazení CD49f také mírně snížilo schopnost migrace buněk na podobnou úroveň, jaká byla pozorována u buněk ošetřených siCD29 (obrázek 4b). Výrazné snížení migrace buněk, ale nikoli jejich životaschopnosti, však bylo pozorováno při současném vyřazení obou látek (obr. 4a-d). Stejných výsledků bylo dosaženo použitím souboru siRNA proti čtyřem různým oblastem v otevřeném čtecím rámci těchto genů (doplňkový obrázek 2a-c). Ověřili jsme také expresi čtyř příbuzných integrinů (integrinů α5 a 7 a integrinů β2 a 3) po vyřazení CD29 a CD49f a údaje ukazují, že tyto siRNA nezměnily expresi ostatních integrinů, což vylučuje zkříženou inhibiční aktivitu těchto siRNA vůči ostatním integrinům (doplňkový obrázek 2d). Celkově tato zjištění naznačují, že integriny α6 a β1 mohou mít překrývající se, avšak kritickou funkční roli v migraci CSC. Tříděním buněk pomocí integrinů α6 a β1 jako markerů tak vlastně obohacujeme buňky, kde tyto proteiny mohou mít funkční roli při zprostředkování migrace buněk in vitro a metastazování rakoviny in vivo.

Obr. 4

CD29 (integrin β1) a CD49f (integrin α6) mají důležitou roli při zprostředkování migrace CSCs. (a) Analýza hladin mRNA pomocí RT-PCR v reálném čase po vyřazení CD29 a CD49f samostatně a společně pomocí Thermo Scientific Individual siRNA, která cílí na otevřený čtecí rámec každého genu. Integrin α6 siRNA je D-040204-05-0002 a integrin β1 je D-040783-01-0002. Jako kontrola byla použita necílená siRNA. (b) Transwellův migrační test buněk W0069. Vlevo jsou zobrazeny kolonie migrujících buněk a vpravo kvantifikace migrujících buněk. (c) Test buněčné proliferace 24, 48 a 72 hodin po vyřazení siRNA u buněk W0069. (d) Transwellův migrační test dvojitě pozitivní buněčné linie odvozené z buněk W0069. (e, f) Imunofluorescence v buňkách CD24+CD29+ a CD24-CD29- pomocí protilátek proti E-kadherinu a ZO-1 (e). RT-PCR v reálném čase s použitím primerů pro geny uvedené v grafu u CD24+CD29+ a CD24-CD29- vytříděných z buněk W0069 (f).

CSC vykazovaly genovou expresi signatury přechodu z epitelu do mezenchymu

Pro pochopení mechanismu, který je základem zvýšené metastatické schopnosti CSC, jsme provedli morfologické a molekulární analýzy jak CD24+CD29+, tak CD24-CD29- buněk. Naše analýza ukázala, že buňky CD24-CD29- vykazovaly výraznější membránovou vazbu E-cadherinu, markeru epiteliálních buněk, než buňky CD24+CD29+ (obr. 4e). qRT-PCR analýza rovněž zjistila vyšší hladiny exprese E-cadherinu u buněk CD24-CD29- než u buněk CD24+CD29+ (obr. 4f). V souladu se sníženými hladinami exprese E-cadherinu vykazovaly buňky CD24+CD29+ také vyšší hladiny exprese několika markerových genů pro mezenchymální buňky, jak bylo zjištěno pomocí qRT-PCR (obrázek 4f) a analýzy Western blot (doplňkový obrázek 2e). Vzhledem k tomu, že oba typy buněk byly odvozeny z karcinomu mléčné žlázy, zvýšený mezenchymální rys CD24+CD29+ buněk naznačuje, že prošly přechodem z epitelu na mezenchym, což poskytuje molekulární základ pro jejich zvýšenou pohyblivost in vitro a metastazování rakoviny in vivo.

Shrnem jsme studovali metastatický potenciál CSC obohacených o populaci CD24+CD29+ buněk izolovaných z myšího modelu karcinomu prsu s mutací Brca1 a naše údaje naznačily, že CSC vykazovaly mnohem vyšší migrační schopnost než non-CSC v tkáňové kultuře a zvýšený metastatický potenciál u alograftů na myších. Prokázali jsme, že CD24+CD29+ buňky si zachovaly schopnost diferenciace a obnovení heterogenity v metastatických nádorech, zatímco CD24-CD29- buňky nikoli. Nejzajímavějším zjištěním však je, že CD29 a CD49f, které byly použity jako markery pro izolaci CSC z myších mamárních nádorů,39, 42, 43 mají překrývající se, avšak kritickou roli při zprostředkování migrace CSC. U myší představuje β1-integrin převážně exprimovaný integrin v epiteliálních buňkách mléčné žlázy a má kritickou roli v progresi rakoviny.44 Zatímco u lidských karcinomů prsu je α6-integrin exprimován ve vysoké míře a slouží jako nezávislý prognostický faktor, jak odhalila studie s časově závislým účinkem omezeným na první 2 roky sledování.45 Přesto zůstává potenciální role obou genů v CSCs karcinomů prsu neobjasněna. Naše údaje ukázaly, že zhoršená funkce samotného integrinu β1 nebo integrinu α6 vede k mnohem mírnějšímu účinku než vyřazení obou genů současně. Toto zjištění je v souladu se skutečností, že oba integríny se mohou navzájem párovat a vytvářet heterodimery pro složky extracelulární matrix, jako je fibronektin a laminin.41, 46, 47, 48, 49 Bylo navrženo, že maligní sociální síť zprostředkovává adhezi buněk a komunikaci mezi CSC a jejich mikroprostředím.20, 21 Naše studie naznačuje důležitou roli β1/α6 integrinů při zprostředkování této sítě. Konkrétně mohou β1/α6 integráty zprostředkovávat interakci CSCs-stroma, přenášet signály z extracelulární matrix do buněčných mechanismů a vést ke zvýšené aktivitě CSCs, pokud jde o životaschopnost, diferenciaci a metastazování.

Articles

Napsat komentář

Vaše e-mailová adresa nebude zveřejněna.